報告基因系統(tǒng)廣泛應(yīng)用于真核生物基因表達和細胞生理學研究,包括受體活性、轉(zhuǎn)錄因子、細胞信號轉(zhuǎn)導(dǎo)、mRNA加工和蛋白質(zhì)折疊等。“雙報告基因”通常被用來提高實驗精確度,即在一個系統(tǒng)中同時表達和測量兩個獨立的報告基因。一般來說,實驗組報告基因與具體實驗條件的影響是相關(guān)的,而共同轉(zhuǎn)染的內(nèi)對照組報告基因則是用來充當校正參數(shù),作為內(nèi)參提供反應(yīng)基線。將實驗組的結(jié)果與內(nèi)對照組的結(jié)果進行約化處理,可降低由細胞存活率或轉(zhuǎn)染效率的差異而導(dǎo)致的結(jié)果波動,同時還可消除由取樣體積、細胞裂解效率和儀器測定引起的實驗誤差。因此雙報告基因檢測可以通過減少外部影響來獲得更可靠的實驗數(shù)據(jù)。
雙螢光素酶報告基因檢測試劑盒(Firefly&Renilla Luciferase Reporter Assay Kit)提供了一種雙報告基因檢測方法,在同一個樣品中先以螢光素(Luciferin)為底物來檢測螢火蟲螢光素酶(Firefly luciferase),后以腔腸素 (Coelenterazine)為底物來檢測海腎螢光素酶(Renillaluciferase),同時淬滅Firefly luciferase的螢光信號,實現(xiàn)雙螢光素酶報告基因檢測。該試劑盒可靈敏高效的檢測受基因元件調(diào)控的螢光素酶表達,通常將轉(zhuǎn)錄調(diào)控元件或5'啟動子區(qū)克隆在螢火蟲螢光素酶的上游,或把 3'-UTR 區(qū)克隆在下游,構(gòu)建成報告基因(reporter gene)質(zhì)粒。將報告基因質(zhì)粒(Firefly)和內(nèi)參質(zhì)粒(Renilla)共轉(zhuǎn)染細胞,經(jīng)給藥刺激等操作完畢后,裂解細胞并測定螢光素酶活性。通過螢光素酶活性的高低來判斷藥物處理對目的基因的轉(zhuǎn)錄調(diào)控作用。海腎螢光素酶作為校正轉(zhuǎn)染效率的內(nèi)參可以消除細胞數(shù)量和轉(zhuǎn)染效率的差異。螢火蟲螢光素酶催化螢光素發(fā)光的強發(fā)光波長為 560nm。海腎螢光素酶催化腔腸素發(fā)光的強發(fā)光波長為465nm,具體波段選用需依據(jù)實驗需求和所用儀器進行設(shè)定,通常采用全波段接收發(fā)射信號即可,不必單獨設(shè)置。
組分名稱 | PMK0981-100T | PMK0981-1000T |
Cell Lysis Buffer (5x) | 10ml | 30ml |
Firefly Luciferase Reaction Buffer | 10ml | 100ml |
Firefly Luciferase Substrate | 1 vial | 1 vial |
Stop &Renilla Reaction Buffer | 10ml | 100ml |
Renilla Luciferase Substrate (50x) | 200ul | 1mLx2 |
(一)自備材料
PBS 溶液;移液器或排槍;黑色酶標板;化學發(fā)光儀或酶標儀,可配自動進樣器進行高通量檢測。
(二)檢測前準備
1. 首次使用時,將Firefly Luciferase Reaction Buffer一次性全部倒入Firefly LuciferaseSubstrate瓶中,渦旋震蕩,底物充分溶解并混勻后按單次實驗需求量進行適當分裝,避光保存于-70℃,避免反復(fù)凍融。
2. 每次使用前以1:4比例將Cell Lysis Buffer(5x)與ddH2O充分混合,置于冰上備用。配制體積根據(jù)實驗需求,現(xiàn)配現(xiàn)用。
3. 使用時將Renilla Luciferase Substrate(50x)于冰上避光暫存,計算實際使用量,以50:1的比例將適量的Stop& Renilla Reaction Buffer與Renilla Luciferase Substrate(50x)混勻,室溫避光備用。建議現(xiàn)配現(xiàn)用,剩余的反應(yīng)液當次實驗結(jié)束后,直接舍棄,不要留存。
(三)操作方法
1. 單管檢測方法
①裂解細胞
a.貼壁細胞:吸去細胞培養(yǎng)基,用PBS緩慢輕柔地洗滌一次,洗去殘留的培養(yǎng)基,然后將液體全部吸棄。懸浮細胞:離心去上清后,清洗細胞一次再次離心收集細胞沉淀。
b.按照下表推薦加入適量1×Cell Lysis Buffer,室溫下靜置或振動搖晃裂解15min,吹打并吸取全部細胞裂解產(chǎn)物至1.5ml離心管中,16000g 離心 5min,取上清用于后續(xù)檢測。
Cell Culture Plate | 6-well | 12-well | 24-well | 48-well | 96-well |
1×Cell Lysis Buffer | 500ul | 200ul | 100ul | 50ul | 20ul |
注:若螢光素酶的表達水平過低,可適當減少細胞裂解液用量以提高蛋白濃度,但需保證裂解液體積可以覆蓋細胞孔板底面否則會影響裂解效果。
②Firefly Luciferase 反應(yīng)檢測
小心吸取20μL細胞裂解上清依次加入至檢測管或酶標板中,再加入100μl平衡至室溫的含有底物的Firefly Luciferase Reaction Buffer,迅速混勻后立即于化學發(fā)光儀或酶標儀中檢測Firefly Luciferase報告基因活性。(注:務(wù)必將反應(yīng)緩沖液恢復(fù)至室溫,使酶促反應(yīng)在適溫度25℃進行。加樣后需要進行混勻,使酶促反應(yīng)充分穩(wěn)定進行。本品Firefly螢光穩(wěn)定性可達30s以上)
③Renilla Luciferase 反應(yīng)檢測
在以上反應(yīng)液中加入100μl現(xiàn)配的Renilla檢測工作液迅速混勻后立即于化學發(fā)光儀或酶標儀中檢測Renilla Luciferase報告基因活性。
2. 通過自動進樣器進行高通量檢測方法
①裂解細胞
a. 貼壁細胞:用排槍吸去細胞培養(yǎng)基,PBS 緩慢輕柔地洗滌一次,洗去殘留的培養(yǎng)基,然后將液體全部吸棄。懸浮細胞:參考單管檢測細胞收集方法,不適合原位裂解。
b. 以 96 孔板為例,用排槍每孔加入20μL 1×Cell Lysis Buffer,室溫下靜置或振動搖晃裂解15min。
②雙酶反應(yīng)檢測
按照儀器說明書完成自動進樣器的初始化操作,設(shè)定自動進樣器1為溶解底物后的Firefly LuciferaseReaction Buffer;自動進樣器2為加入底物的Stop & Renilla Reaction Buffer。設(shè)置檢測程序,通過自動進樣器 1 加入 100μL 平衡至室溫的含有底物的Firefly Luciferase Reaction Buffer,振板1-2s混勻,檢測Firefly Luciferase 報告基因活性。通過自動進樣器2加入100μl的Renilla檢測工作液,振板1-2s混勻,檢測 Renilla Luciferase 報告基因活性。以此程序完成96孔板的所有樣品檢測。(注:務(wù)必將反應(yīng)緩沖液恢復(fù)至室溫,使酶促反應(yīng)在適溫度25℃進行。加樣后,需要進行振板混勻,使酶促反應(yīng)充分穩(wěn)定進行。本品Firefly螢光穩(wěn)定性可達30s 以上)
1. 檢測儀器選擇:能夠檢測化學發(fā)光的儀器都適用本試劑盒的檢測,但是針對相同的樣品,不同檢測器本底信號值和測量值均可能不同,且對于同一樣本檢測,不同儀器的數(shù)值不可橫向比較。為防止孔間干擾,推薦使用黑色酶標板。本產(chǎn)品支持配有自動進樣器的酶標儀,可以更好的減小人為操作時間造成的孔間差異,具體操作請參考配套的自動進樣器說明書。
2. 如果體系中螢光素酶表達量較低,可適當減少裂解用量以提高蛋白濃度,同時應(yīng)增加檢測復(fù)孔的數(shù)量,以減少低濃度表達造成的孔間差異,確保結(jié)果的可靠性。
3. 酶促反應(yīng)對溫度較為敏感,加樣檢測前務(wù)必將細胞裂解產(chǎn)物和檢測底物均平衡至室溫后使用。4. 為保證螢光素酶檢測試劑穩(wěn)定性,可采取適當分裝后-70℃冰箱避光保存的方法,以避免反復(fù)凍融和長時間暴露于室溫。檢測前根據(jù)需要取適
量分裝后的反應(yīng)溶液室溫(25℃)水浴復(fù)融,充分渦旋混勻后使用。
5. 裂解產(chǎn)物與 Firefly 發(fā)光反應(yīng)液接觸后約 30s 內(nèi)螢光強度較為穩(wěn)定,為取得佳檢測結(jié)果,在使用單管的化學發(fā)光儀檢測時,不同樣品和底物混合后至上機檢測的時間間隔應(yīng)盡量一致;使用具有化學發(fā)光測定功能的多功能酶標儀時,應(yīng)先把細胞裂解液在孔內(nèi)加好,然后采用排槍統(tǒng)一加入檢測底物并盡快上機檢測。
6. 加入 Stop & Renilla Reaction Buffer 后對于螢火蟲螢光素酶的抑制可以達到99.999%以上,建議通過以下方法提高淬滅效果:使用單管的化學發(fā)光檢測儀時,加入抑制緩沖溶液后可緩慢吹打混勻2-3次即可(切勿吹起大量氣泡);使用多功能酶標儀時,可通過增加混勻振幅或延長振動時間(1-2s)。
7. 使用配有自動進樣器的多功能酶標儀進行高通量檢測時,注意選擇合適的進樣速度。加入FireflyLuciferase Reaction Buffer 應(yīng)選擇低速模式,避免形成大量氣泡;加入Stop & Renilla ReactionBuffer可以選擇略高一些的中速模式,有助于液體充分混勻達到更好的淬滅效果。
8. Renilla Luciferase Substrate (50x) 配制在無水乙醇中。由于無水乙醇容易揮發(fā),有時會在初次使用時發(fā)現(xiàn)體積明顯小于包裝規(guī)格的情況,此時用無水乙醇把體積補足至包裝規(guī)格,并混勻后即可使用。
9. 螢火蟲螢光素酶催化的生物發(fā)光的強波長為560 nm,海腎螢光素酶催化的生物發(fā)光的強波長為480 nm。
10. 該試劑僅用于科研領(lǐng)域,不適用于臨床診斷或其他用途。
11. 為了您的安全和健康,請穿實驗服并戴一次性手套操作。
靈敏度是試劑盒多次檢測空白樣本計算得到的低檢出限,只有樣本濃度高于試劑盒的靈敏度時檢測具有意義。
試劑盒檢測范圍是表示當樣本濃度在該范圍內(nèi),其濃度和檢測OD值具有良好的線性更新,能夠準確定量樣本的濃度情況。
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