谷氨酸脫氫酶(GDH)位于動植物以及微生物體中,對于三羧酸循環(huán)的能量代謝、細胞內(nèi)氧化還原平衡、氨含量的穩(wěn)態(tài)維持和信號轉(zhuǎn)導的調(diào)控起著至關重要的作用。它和谷氨酸合成酶(GOGAT)共同參與谷氨酸的合成,在氨同化和轉(zhuǎn)化成有機氮化合物的代謝中起重要作用。本試劑盒提供了一種簡單的比色法來檢測生物樣本中谷氨酸脫氫酶(GDH)活性。其原理是GDH催化NH4+、α-酮戊二酸和NADH,生成谷氨酸和NAD+,NADH在340nm處有特征吸收峰,NADH的消耗引起340nm吸光度下降。通過測定340nm吸光度的下降速率,計算GDH活性
試劑盒組分 | 規(guī)格 | 儲存條件 | |
48T | 96T | ||
提取液 | 50mL | 100mL | 4℃保存 |
試劑一 | 10mL | 20mL | 4℃保存 |
試劑二 | 粉劑×1瓶 | 粉劑×2瓶 | 4℃保存 |
自備耗材
酶標儀或紫外分光光度計(能測 340nm處的吸光值)及恒溫培養(yǎng)箱
96孔UV微孔板或微量石英比色皿、可調(diào)節(jié)式移液槍及槍頭
離心機、制冰機
去離子水
勻漿器(如果是組織樣本)
試劑準備
提取液:即用型; 4℃保存。
試劑一:即用型;使用前平衡到室溫;4℃保存。
試劑二:臨用前每瓶試劑二中加入10mL試劑一充分溶解混勻,現(xiàn)配現(xiàn)用(配好后12h內(nèi)用完)。
樣本制備
組織:稱取約0.1g組織,加入1mL預冷的提取液,冰浴勻漿。8,000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
細菌或細胞:先收集500萬細菌或細胞到離心管內(nèi),用冷PBS清洗細菌或細胞,離心后棄上清,加入1mL預冷的提取液,冰浴超聲波破碎細菌或細胞5min(功率20%或200W,超聲3s,間隔7s,重復30次),然后, 8,000g 4℃離心10min,取上清,置冰上待測。
血清(漿)等液體樣本: 可直接測定。
注意:推薦使用新鮮樣本,如果不立即進行實驗,樣本可在-80℃保存1個月。如需測定蛋白濃度,推薦使用BCA法蛋白質(zhì)定量試劑盒,進行樣本蛋白質(zhì)濃度測定。
實驗步驟
1. 酶標儀或可見光分光光度計預熱30min以上,調(diào)節(jié)波長到340nm,可見光分光光度計去離子水調(diào)零。
2. 試劑二置于37℃(哺乳動物)或25℃(其它物種)水浴5min。
3. 樣本測定:在96孔UV微孔板或微量石英比色皿中加入10μL樣本和190μL試劑二,混勻,立即記錄340nm處20s時的吸光值A1和5min20s后的吸光值A2,計算ΔA=A1-A2。
注意:實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果ΔA小于0.001可適當加大樣本量。如果ΔA測大于0.5,樣本可用提取液進一步稀釋,計算結(jié)果乘以稀釋倍數(shù)。
結(jié)果計算
A. 用 96 孔板測定的計算公式如下:
1.按樣本鮮重計算:
單位的定義:每g組織在反應體系中每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位U。
GDH(U/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W×V樣÷V樣總)÷T=1286×ΔA÷W
2. 按液體體積計算:
單位的定義:每mL液體樣本在反應體系中每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位U。
GDH(U/mL)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷V樣÷T=1286×ΔA
3. 按細菌或細胞數(shù)量計算:
單位的定義:每1萬個細菌或細胞在反應體系中每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位U。
GDH(U/104 Cells)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(500×V樣÷V樣總)÷T=2.572×ΔA
4. 按樣本蛋白濃度計算:
單位的定義:每mg組織蛋白在反應體系中每分鐘消耗1nmol NADH定義為一個酶活力單位U。
GDH(U/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(V樣×Cpr)÷T=1286×ΔA÷Cpr
V反總:反應體系總體積,2×10-4 L;ε:NADH 摩爾消光系數(shù),6.22×103 L/mol/cm;d:96孔板光徑,0.5cm;109:1 mol=109 nmol;V樣:加入樣本體積,0.01mL;V樣總:加入提取液體積,1mL;T:反應時間,5min;W:樣本質(zhì)量,g;500:細菌或細胞總數(shù),500萬個;Cpr:樣本蛋白質(zhì)濃度,mg/mL。
B. 使用微量石英比色皿測定的計算公式
將上述計算公式中光徑 d:0.5cm 調(diào)整為 d:1cm 進行計算即可。
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答:可能的原因有:
1、膠濃度不對,不同濃度的膠跑出的蛋白條帶的位置可能有所偏差,可以調(diào)整濃度;
2、抗體孵育不充分,建議增加抗體濃度,延長孵育時間;
3、酶失活,建議直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內(nèi)、有活性的酶聯(lián)物;
4、目的蛋白存在翻譯后修飾或剪切體,建議查詢相關文獻確定;
5、標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低,建議設置陽性對照比對結(jié)果,增加標本上樣量。
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