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硫氧還蛋白過氧化物酶(TPX)檢測試劑盒(微量法)
貨號:PMK1026
一鍵復制產品信息
價格:
330.00
規格:
48T
96T
貨期:
現貨
-20°C避光保存12個月
Details
產品詳情
  • 產品簡介

    硫氧還蛋白過氧化物酶(TPX)屬于過氧化物酶家族,在體內主要通過還原過氧化氫和一些氫過氧化物來實現抗氧化作用,功能與谷胱甘肽過氧化物酶(GPX)類似,也是谷胱甘肽氧化還原循環關鍵酶之一。TPX普遍存在于各種生物體內,如酵母、植物、動物、原生動物、寄生蟲、細菌和古細菌,在進化上高度保守。TPX與細胞增殖、分化、細胞凋亡及腫瘤發生調控密切相關。TPX的主要功能包括細胞脫毒、抗氧化和調節由過氧化氫介導的信號轉導和免疫反應。試劑盒提供了一種簡單的檢測方法檢測生物樣本,如血清(漿)、動物組織、細胞及細菌樣本中TPX的活性。TPX催化H2O2氧化二硫蘇糖醇(DTT),通過測定240 nmH2O2的吸收波長)吸光度的下降速率,用總活性減去過氧化氫酶(CAT)催化分解的H2O2,即可計算出TPX活性。本試劑盒可以同時測定樣品TPXCAT活性。 

  • 產品內容

    image.png

  • 自備耗材

    酶標儀或紫外分光光度計(能測240 nm處的吸光度)及水浴鍋

    96孔UV微孔或微量石英比色皿、可調節式移液槍及槍頭

    低溫離心機、制冰機

    去離子水

    勻漿器(如果是組織樣本)


  • 試劑準備

    試劑一:即用型;室溫保存。

    試劑二:即用型;使用前,平衡至室溫;-20℃避光保存。

    試劑三:即用型;使用前,平衡至室溫;4℃避光保存。


  • 樣本制備

    物組織:稱取約0.1g樣本,加入1mL 試劑一,冰浴勻漿,8,000g4℃離心10min,取上清液,置冰上待測。

    細胞、細菌:收集500萬細胞或細菌到離心管內,用冷PBS清洗細胞,離心后棄上清,加入1mL 試劑一,冰浴超聲波破碎細胞或細菌5min(功率20%或200 W,超聲3s,間隔7s,重復30次),然后8,000g,4℃離心10min,取上清液,置冰上待測。

    血清等液體的準備:直接測定

    注意:1. 推薦使用新鮮樣本,如果不立即進行實驗,樣本可在-80℃保存1個月樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力,勻漿液避免反復凍融

    2, 細胞中TPX活性測定時,細胞數目須在3-5×106之間,細胞中TPX的提取時可加試劑一勻漿或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。

    3. 如需測定蛋白濃度,推薦使用BCA法蛋白質定量試劑盒,進行樣本蛋白質濃度測定。


  • 實驗步驟

    1.酶標儀或紫外分光光度計預熱30min以上,調節波長至240nm,紫外分光光度計去離子水調零。

    2.試劑一試劑二置于 25(一般物種)或者 37(哺乳動物)預熱30min。

    3.樣本測定:96孔UV板或微量石英比色皿中加樣,每孔先加入4μL樣本上清液,再加入180μL 試劑一CAT活性測定)或 180μL 試劑二(總活性測定),后加入16μL試劑三充分混勻。測定240nm處的吸光值,分別記錄10s和130s吸光值,CAT活性記為A1A2總活性測定記為A3A4

    注意:1. 實驗之前建議選擇 2-3 個預期差異大的樣本做預實驗。

    2. 測定反應的溫度對測定結果有影響,請控制在25℃(一般物種)或者37℃(哺乳動物)。

    3. 因通過反應速率計算酶活,使用96孔UV板時請根據操作速度控制一次測定的樣本數(通常一次測定4-8個樣本


  • 結果計算

    A. 使用96孔UV微孔板測定的計算公式如下

    (1) 按蛋白濃度計算

    活性單位(U)定義:25℃或者 37℃中,每毫克蛋白每分鐘催化1nmol H2O2降解1個酶活單位

    CAT活性(U/mg prot)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反總÷(Cpr×V) ÷T=1147×(A1-A2)÷Cpr

    總活性(U/mg prot)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反總÷(Cpr×V)÷T=1147×(A3-A4)÷Cpr

    TPX 活性(U/mg prot)=總活性-CAT活性

    2)按樣本鮮重計算

    活性單位(U)定義: 25℃或者 37℃中,每克樣品每分鐘催化1nmol H2O2降解1個酶活單位

    CAT活性(U/g 鮮重)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反總÷(V÷V樣總×W)÷T=1147×(A1-A2)÷W

    總活性(U/g 鮮重)= (A3-A4)÷(ε×d)×V反總÷(V÷V樣總×W)÷T=1147×(A3-A4)÷W

    TPX 活性(U/g 鮮重)=總活性-CAT活性

    3)細胞數量計算

    活性單位(U)定義:25℃或者 37℃中,每104個細胞每分鐘催化1nmol H2O2降解1個酶活單位

    CAT活性(U/104 cells)= (A1-A2)÷(ε×d)×V反總÷(500×V÷V樣總)÷T=1147×(A1-A2)÷500=2.294×(A1-A2)

    總活性(U/104 cells)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反總÷(500×V÷V樣總)÷T=1147×(A3-A4)÷500=2.294×(A3-A4)

    TPX 活性(U/104 cell)=總活性-CAT活性

    4)按液體體積計算

    活性單位(U)定義:25℃或者 37℃中,每毫升液體每分鐘催化催化1nmol H2O2降解1個酶活單位

    CAT活性(U/mL)=(A1-A2)÷(ε×d)×V反總÷V÷T=1147×(A1-A2)

    總活性(U/mL)=(A3-A4)÷(ε×d)×V反總÷V÷T=1147×(A3-A4)

    TPX活性(U/mL)=總活性-CAT活性

    ε: H2O2摩爾消光系數,43600 L/mol/cm=0.0436 mL/nmol/cm; d:96孔板光徑,0.5cm;V反總:反應體系總體積,200μL=0.2mL;Cpr:上清液蛋白質濃度,mg/mL; W:樣品質量,0.1g;V:加入反應體系中上清液體積,4μL = 4×10-3 mL; V樣總:提取液體積,1mL;T:反應時間,2min; 500:細胞數量, 5×106

    B. 使用微量石英比色皿進行測定的計算公式

    將上述計算公式中光徑 d:0.5cm 調整為 d:1cm 進行計算即可。


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Published literature
已發表文獻
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Product Q&A FAQ
產品問答FAQ
  • Western Blot(WB)實驗中蛋白條帶位置(大小)不對咋整?

    答:可能的原因有:

    1、膠濃度不對,不同濃度的膠跑出的蛋白條帶的位置可能有所偏差,可以調整濃度;

    2、抗體孵育不充分,建議增加抗體濃度,延長孵育時間;

    3、酶失活,建議直接將酶和底物進行混合,如果不顯色則說明酶失活了。選擇在有效期內、有活性的酶聯物;

    4、目的蛋白存在翻譯后修飾或剪切體,建議查詢相關文獻確定;

    5、標本中不含靶蛋白或靶蛋白含量太低,建議設置陽性對照比對結果,增加標本上樣量。


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