谷胱甘肽還原酶(GR)是廣泛存在于真核和原核生物中的一種黃素蛋白氧化還原酶,GR催化GSSG還原生成GSH,是谷胱甘肽氧化還原循環的關鍵酶之一(通常昆蟲中GR被硫氧還蛋白還原酶(TrxR)取代)。GR催化NADPH還原GSSG生成GSH,有助于維持體內GSH/GSSG比值平衡。GR在氧化脅迫反應中對活性氧清除起關鍵作用,此外,GR還參與抗壞血酸-谷胱甘肽循環途徑。本試劑盒提供了一種簡單的檢測方法,用于檢測生物樣本,如血清(漿)、動植物組織、細胞以及細菌樣本中GR的活性水平。其原理是,GR能催化NADPH還原GSSG再生GSH,同時NADPH脫氫生成NADP+;NADPH在340nm有特征吸收峰,相反NADP+在該波長無吸收峰;通過測定340nm吸光度下降速率來測定NADPH脫氫速率,從而計算GR活性。
酶標儀或紫外分光光度計(能測340nm處的吸光度)及水浴鍋
96孔UV板或微量石英比色皿、可調節式移液槍及槍頭
低溫離心機
去離子水
勻漿器(如果是組織樣本)
試劑一: 即用型;使用前,平衡到室溫;4℃保存。
試劑二: 即用型;使用前,平衡到室溫;4℃避光保存。
試劑三:粉劑;使用前96T每管加入2mL去離子水,48T加入1mL去離子水,混勻,現配現用,置于冰上;分裝-20℃避光保存。
動植物組織:稱取約0.1g樣本,加入1mL預冷的試劑一,冰浴勻漿,10,000g,4℃離心10min,取上清液,置冰上待測。
細胞或細菌:收集500萬細胞或細菌到離心管內,用冷PBS清洗細胞,離心后棄上清,加入1mL預冷的試劑一,冰浴超聲波破碎細胞或細菌5min(功率20%或200W,超聲3s,間隔7s,重復30次),然后10,000g,4℃離心10min,取上清液,置冰上待測。
血清(漿):直接測定。
注意:
1. 推薦使用新鮮樣本,如果不立即進行實驗,樣本可在-80℃保存1個月,樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力,勻漿液避免反復凍融。
2. 細胞中GR活性測定時,細胞數目須在3~5×106之間,細胞中GR的提取時可加試劑一后勻漿或超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞。
3. 如需測定蛋白濃度,推薦使用BCA法蛋白質定量試劑盒,進行樣本蛋白質濃度測定。由于試劑一中含有一定濃度的蛋白(約0.1mg/mL),所以在測定樣本蛋白濃度時需要減去試劑一本身的蛋白含量。
1. 酶標儀或紫外分光光度計預熱30min以上,調節波長到340nm,紫外分光光度計去離子水調零。
2. 試劑一置于25℃(普通物種)或者 37℃(哺乳動物)中預熱30min以上。
3. 樣本測定:在96孔UV板或微量石英比色皿中依次加入10μL試劑二,20μL試劑三,20μL樣本,150μL試劑一,混勻,于340nm 測定10s和190s吸光度,記為 A1和A2,計算△A=A1-A2
注意:
1. 實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。確保180s內吸光值變化呈線性(可每分鐘測定1次觀察變化趨勢),當出現初始180s內吸光值不穩定時,可以適當延長反應時間,選取相對穩定的時間段內吸光值變化值。如果ΔA小于0.001可適當加大樣本量;如果吸光值變化較為劇烈且不呈線性,樣本可用試劑一進一步稀釋,計算結果乘以稀釋倍數,哺乳動物組織一般須用試劑一稀釋2~5倍。
2. 測定反應的溫度對測定結果有影響,請控制在25℃(一般物種)或者37℃(哺乳動物)。
3. 因通過反應速率計算酶活,使用96孔UV板時請根據操作速度控制一次測定的樣本數(通常一次測定4-8個樣本)。
A. 使用96孔板測定的計算公式
(1)按蛋白濃度計算
活性單位定義:在一定溫度,pH 8.0條件下,每毫克蛋白在反應體系中每分鐘催化1nmol NADPH氧化。
GR酶活(U/mg prot)=[△A÷(ε×d)×V反總×109]÷(Cpr×V樣)÷T=1072×△A÷Cpr
(2)按樣本鮮重計算
活性單位定義:在一定溫度,pH 8.0 條件下每克樣品在反應體系中每分鐘催化1nmol NADPH氧化。
GR酶活(U/g 鮮重)= [△A÷(ε×d)×V反總×109]÷(V樣÷V樣總×W)÷T=1072×△A÷W
(3)按細胞數量計算
活性單位定義:在一定溫度,pH 8.0 條件下,每104個細胞在反應體系中每分鐘催化1nmol NADPH氧化。
GR酶活(U/104 Cells)=[△A÷(ε×d) ×V反總×109]÷(500×V樣÷V樣總)÷T=2.144×△A
(4)按液體體積計算
活性單位定義:在一定溫度中,pH 8.0 條件下,每毫升液體樣本在反應體系中每分鐘催化1nmol NADPH氧化。
GR 酶活(U/mL)=[△A÷(ε×d)×V反總×109]÷V樣÷T=1072×△A
ε:NADPH 摩爾消光系數 6.22×103 L/mol/cm;d:96 孔板光徑,0.5cm;V反總:反應體系總體積,200μL=2×10-4 L;109:1mol=1×109nmol;Cpr:上清液蛋白濃度,mg/mL;W:樣品質量,g;V樣:加入反應體系中上清液體積,20μL=2×10-2 mL;V樣總:提取液體積,1mL;T:反應時間,3min;500:細胞數量,5×106。
B. 使用微量玻璃比色皿測定的計算公式
將上述計算公式中的光徑d:0.5cm調整為d:1cm進行計算即可。
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答:可能的原因有:
1、膠凝的不均勻或聚合不好,建議灌膠前將溶液充分混勻;
2、某些樣品鹽濃度較高,建議除鹽或將樣品鹽濃度調成一致;
3、緩沖液陳舊,成分改變,可以重配;
4、凝膠下面有氣泡,電泳前要先將氣泡趕走;
5、電泳時溫度過高,可以降低電流或電壓;
6、樣品中含有不溶性顆粒,建議樣品充分攪拌混勻。
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