γ-谷氨酰轉肽酶(γ-GT)是γ-谷氨酰循環中的關鍵酶,催化GSH降解。γ-GT催化GSH或者其他γ-谷氨酰基化合物上的γ-谷氨酰基轉移到受體,也可以催化GSH和其他γ-谷氨酰基化合物的水解,產生谷氨酸鹽,在細胞外谷胱甘肽新陳代謝中起了重要的作用。本試劑盒提供了一種簡單的檢測方法,用于檢測生物樣本,如血清(漿)、動植物組織、細胞、細菌樣本中γ-GT的活性。原理是γ-GT催化谷氨酰對硝基苯胺中γ-谷氨酰基轉移給N-甘氨酰甘氨酸,生成對硝基苯胺,在405 nm有特征光吸收;通過測定405 nm光吸收增加速率,來計算γ-GT酶活性。
酶標儀或可見分光光度計(能測405 nm處的吸光度)及水浴鍋
96 孔板或微量玻璃比色皿、低溫離心機、制冰機
可調節式移液槍及槍頭
去離子水
勻漿器(如果是組織樣本)
提取液:即用型;使用前,平衡到室溫;4℃保存。
工作液:臨用前配制;將試劑二加入試劑一充分溶解(室溫過低時可以40℃水浴促進溶解);然后將試劑三加入試劑一瓶中;4℃保存。
樣本制備
組織樣本:稱取約0.1 g組織,加入1 mL 提取液,進行冰浴勻漿,8,000 g,4℃離心15 min,取上清,置冰上待測。
細胞、細菌:收集500萬細菌或細胞加入1 mL 提取液,冰浴超聲波破碎細胞3 min(功率20%或200 W,超聲3 s,間隔7 s);然后8,000 g,4℃,離心15 min,取上清,置于冰上待測。
血清(漿)等液體:直接測定。
注意:1. 推薦使用新鮮樣本,如果不立即進行實驗,樣本可在-80℃保存1個月。樣品處理等過程均需要在冰上進行,且須在當日測定酶活力,以免影響其活力。如果是勻漿液,避免反復凍融。
2. 細胞中γ-GT活性測定時,細胞數目須在300萬-500萬之間,細胞中γ-GT的提取時可加提取液后超聲波處理,不能用細胞裂解液處理細胞(防止因為蛋白質變性導致酶失活)。
3. 如需要進行樣本蛋白質濃度測定時,推薦用BCA法蛋白質定量試劑盒。
1. 酶標儀或可見分光光度計預熱30 min以上,調節波長到405 nm,可見分光光度計去離子水調零。
2. 工作液置于25℃(一般物種)或者37℃(哺乳動物)水浴中預熱30min以上(保證無沉淀)。
3. 樣本測定:在96 孔板或微量玻璃比色皿中 依次加入20μL樣本,180μL工作液,
迅速混勻后于405 nm處測定10s和70s時的吸光度,記為A1,A2計算ΔA=A2-A1。
注意:1. 實驗之前建議選擇2-3個預期差異大的樣本做預實驗。如果ΔA小于0.001可適當加大樣本量;如果ΔA大于0.5樣本可用去離子水進一步稀釋,計算結果乘以稀釋倍數。
2. 測定反應的溫度對測定結果有影響,請控制在25℃(一般物種)或者37℃(哺乳動物)。
3. 因通過反應速率計算酶活,使用96孔UV板時請根據操作速度控制一次測定的樣本數(通常一次測定4-8個樣本)。
A. 使用96孔板測定的計算公式
1. 按蛋白濃度計算
活性單位(U)定義:25℃或37℃中,每毫克蛋白每分鐘催化產生1nmol對硝基苯胺為一個活性單位。
γ-GT(U/mg prot)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(Cpr×V樣)÷T=2026×ΔA÷Cpr
2. 按樣本鮮重計算:
活性單位(U)定義:25℃或37℃中,每克組織每分鐘催化產生1nmol對硝基苯胺為一個活性單位。
γ-GT(U/g 鮮重)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(W÷V 樣總×V樣)÷T=2026×ΔA÷W
3. 按血清(漿)計算:
活性單位(U)定義:25℃或37℃中,每毫升血清每分鐘催化產生1nmol對硝基苯胺為一個活性單位。
γ-GT(U/mL)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷V樣÷T =2026×ΔA
4. 按細菌或培養細胞計算:
單位的定義:25℃或37℃中,每1萬個細菌或細胞每分鐘催化產生1nmol對硝基苯胺為一個活性單位。
γ-GT(U/104 cells)=[ΔA×V反總÷(ε×d)×109]÷(500÷V 樣總×V樣)÷T= 4.053×ΔA
V 樣:加入樣品體積,0.02 mL; V 樣總:加入提取液體積,1 mL;V反總:反應體系總體積,2×10-4 L;T:反應時間,1 min; Cpr:樣本蛋白質濃度,mg/mL; W:樣本質量,g; 500:500萬細胞; ε:對硝基苯胺消光系數,9870 L/mol/cm; d:比色皿光徑, 0.5 cm;109:單位換算系數,1 mol=109 nmol。
B. 使用微量玻璃比色皿進行測定的計算公式
將上述計算公式中光徑 d:0.5 cm 調整為 d:1 cm 進行計算即可。
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答:可能的原因有:
1、膜沒有完全均勻濕透,建議 使用100% methanol浸透膜;
2、洗膜不充分,可以增加洗液體積和洗滌次數;
3、電極不平衡或者加樣位置偏斜,可以調整電極和加樣;
4、封閉物用量不足,可以提高封閉物濃度,孵育時保證封閉液完全浸沒轉印膜;
5、封閉物使用不當,比如檢測生物素標記的蛋白時不可用脫脂奶粉封閉;
6、封閉時間不夠,一般情況下室溫37度封閉1小時以上或者4度封閉過夜;
7、抗體非特異性結合,可以降低抗體濃度,減少孵育時間;
8、一抗稀釋度不適宜,可以對抗體進行滴度測試,選擇適宜的抗體稀釋度;
9、一抗孵育的溫度偏高,建議4℃結合過夜;
10、抗體濃度過高或洗滌不夠,建議降低抗體濃度,增加洗滌次數和時間;
11、化學顯色底物過多,建議按說明書加入適量的顯色底物。
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